Dierlijke infectietesten van pathogene micro-organismen zijn een belangrijk risicopreventiepunt voor biologische veiligheidsongevallen. Ziekteverwekkers die door geïnfecteerde dieren worden gedragen, kunnen tijdens de operatie experimentele werknemers infecteren via luchtaerosolen, secreties en uitwerpselen.
De werking van een infectie bij dieren omvat anesthesie bij dieren, toediening van medicijnen, monsterafname, euthanasie en autopsie. Het kippenembryo-experiment kan ook worden toegeschreven aan de operatie van besmette dieren, wat verschillende ongelukken kan veroorzaken. In dit artikel worden de soorten ongevallen, noodplannen, operaties op de plaats van het ongeval en het voorkomen van ongevallen één voor één uitgelegd.
1. Soorten ongevallen in dierenlab
1.1 Steek- of snijwonden Steekwonden komen vaak voor bij anesthesie, medicijntoediening, bemonstering en inenting van kippenembryo's. Incisieverwondingen treden vaak op tijdens operaties, anatomie, enz.
1.2 Krabbeten Krabbeten komen vaak voor tijdens het proces van strooiselvervanging, anesthesie, temperatuurmeting, etc.
1.3 Ontsnapping van dieren komt vaak voor tijdens anesthesie en vervanging van het strooisel.
1.4 Overdosering van anesthesie Overdosering van anesthesie bij middelgrote en grote dieren wordt als een ongeval beschouwd.
1.5 Onverwacht kippenembryo-experiment
· Steken bij het inoculeren van kippenembryo's
· Morsen bij het verzamelen van virussen
· Vallen tijdens het vervoeren van kippenembryo's
2. Noodplan ongevallen in proefdierlab
2.1 Als reactie op mogelijke besmettelijke dierproefongevallen moet, om de veilige en stabiele werking van het bioveiligheidslaboratorium te waarborgen, een effectief plan voor de afhandeling van ongevallen worden opgesteld.
2.2 Het principe van de verwijderingsprocedure in geval van een ongeval is het beschermen van de gezondheid en veiligheid van het personeel en het minimaliseren van de vervuiling van de laboratoriumomgeving en de externe omgeving.
2.3 Het principe van het nemen van maatregelen is het beheersen van proliferatie, het beheersen van de infectiebron en het veilig verwijderen van verontreinigde materialen en verontreinigde plaatsen.
2.4 Het noodplan moet omvatten (niet beperkt tot): verantwoordelijke persoon, organisatie, noodcommunicatie, rapportinhoud, persoonlijke bescherming en reactieprocedures, nooduitrusting, evacuatieplannen en -routes, isolatie en desinfectie van vervuilingsbronnen, isolatie en behandeling van personeel, on-site isolatie en controle, risicocommunicatie, etc.
2.5 Het laboratorium dient al het personeel (inclusief bezoekers) te trainen om bekend te zijn met noodprocedures, evacuatieroutes en evacuatie-verzamelplaatsen; minimaal één keer per jaar oefenen
3. Belangrijkste punten van on-site afhandeling van ongevallen in dierenlab
Wanneer er een dierongeval plaatsvindt in het laboratorium, is verwijdering ter plaatse erg belangrijk, en gedetailleerde behandeling zal het risico op laboratoriumbesmetting en personeelsinfectie aanzienlijk verminderen. Tegelijkertijd is het uitgerust met de nodige EHBO-apparatuur en apparatuur voor behandeling en gebruik ter plaatse. De locatie van de EHBO-doos: moet in het beschermde gebied worden geplaatst. Samenstelling (inclusief maar niet beperkt tot): 75% ethanol, jodofoor, pleister, gaas, verband, schaar/pincet, medische tape, etc.
01) Behandeling ter plaatse van prikaccidenten/snijwonden en krassen en beten
① Stop het experiment onmiddellijk en plaats de proefdieren in een afgesloten kooi.
② Een andere experimentator sproeide 75% ethanol op de gewonde en deed zijn handschoenen uit (in de biologische veiligheidskast)
③ Knijp met uw handen in het deel om het bloed eruit te laten stromen en was de wond met schoon water of oogspoelwater.
④ Haal de EHBO-doos tevoorschijn en veeg de besmette huid en wond meerdere keren af met jodofoor of een geschikt desinfectiemiddel.
⑤ De wond goed aankleden, schone handschoenen dragen en het laboratorium evacueren en verlaten volgens de voorgeschreven route
⑥ Ongevallenrapport
⑦ Medische evaluatie/aangewezen ziekenhuisbehandeling/isolatie, etc.
De focus van de afhandeling ter plaatse van dit type ongeval:
① Controle dieren
② Maak de wond schoon
beeld
02) On-site behandeling van ontsnapte dieren
① Stop het experiment onmiddellijk en ga op jacht. In principe verlaat het personeel het dierlaboratorium niet voordat het ontsnapte dier is gevangen.
② Als een klein knaagdier ontsnapt naar het laboratorium, gebruik dan onmiddellijk een pincet met lange steel om snel en stevig de wortel van de staart vast te klemmen om het dier te grijpen en in de kooi te plaatsen. Als het dier snel ontsnapt en niet gemakkelijk vast te pakken is met een pincet, gebruik dan een speciale netzak om het vast te pakken. Als het dier ontsnapt naar een plaats onder de uitrusting die niet gemakkelijk vast te pakken is, gebruik dan de handgreep van de netzak (de netzak kan worden opgesplitst in een handgreep en een netzak) om het dier voorzichtig uit de uitrusting te drijven alvorens te grijpen.
③ Verhoog de frequentie van ventilatie binnenshuis, bedek de ontsnappingsroute van het dier en het bloed en de afscheidingen die door het dier worden bespat met een natte desinfecterende doek of papieren handdoek gedurende 30 minuten, en plaats het vervolgens in de gespecificeerde container voor autoclaaf; en melden bij de dienstdoende persoon Organiseer een tweede ontsmetting.
De focus van de afhandeling ter plaatse van dit type ongeval:
① Ontsnapping van knaagdieren komt vaker voor en de vangst moet worden beperkt tot het laboratorium. Raak niet in paniek en pak meerdere keren. Minimaliseer irritatie bij dieren.
② In principe mogen ontsnappende dieren het laboratorium niet verlaten voordat ze zijn geruimd, om te voorkomen dat de dieren vanuit het laboratorium ontsnappen naar de openbare ruimte en grotere gezondheidsincidenten veroorzaken.
03) On-site behandeling van een overdosis anesthesie
Tekenen van een overdosis anesthesie
Mild: Verwijst naar proefdieren die hun ademhaling aanzienlijk hebben vertraagd en milde hypoxie hebben, zoals hun tong die van felrood naar donker verandert, maar ze ademen nog steeds regelmatig. De ademhalingsdiepte is normaal en de bloedsomloop heeft geen duidelijke obstakels. Bloeddruk en hartslag zijn normaal.
Ernstig: de ademhalingsfrequentie daalt drastisch en onregelmatig, soms niet, en plotseling diep en oppervlakkig, duidelijke hypoxie, zoals een paarse tong, de partiële zuurstofdruk en zuurstofverzadiging in de bloedtest worden aanzienlijk verminderd en de bloedsomloop wordt aangetast. de hartslag vertraagt, de bloeddruk daalt. Er zijn echter hoornvliesreflexen.
Kritiek: ademhalingsstilstand, langzame en onregelmatige hartslag, daling van de bloeddruk of hartstilstand.
Aanpak
① Wanneer de ademhaling extreem langzaam en onregelmatig is, maar de hartslag normaal is: geef kunstmatige beademing - borstcompressie en geef geschikte verjongingsmiddelen.
② Wanneer de ademhaling is gestopt en er nog steeds hartslag is: ① Voer kunstmatige beademing uit, gebruik indien nodig kunstmatige beademing of zuurstof (inademing van O2 is goed voor 95%, CO2 is goed voor 5%); ② Injecteer 50% glucose-oplossing; ③ Geef adrenaline en verjongend middel. Gebruik 5% natriumbicarbonaat intraveneus om acidose te corrigeren.
③ Bij stoppen van ademhaling en hartslag: intracardiale injectie van 1:10000 adrenaline-oplossing. Het ademhalingsstimulerend middel 25% Nixamir wordt intraveneus of intracardiaal geïnjecteerd. Een injectie van 20 mg/ml dopamine verhoogt de bloeddruk. Gebruik 5% natriumbicarbonaat intraveneus om acidose te corrigeren.
De focus van de afhandeling ter plaatse van dit type ongeval:
① Middelgrote en grote dieren zijn vatbaar voor een overdosis anesthesie.
② Voorkom krassen en beten tijdens eerste hulp tijdens een overdosis anesthesie.
beeld
04) Omgaan met ongevallen bij kippenembryo-experiment
Steken tijdens inoculatie van kippenembryo's - de behandeling is hetzelfde als 1 "steekwondbehandeling"
Morsen tijdens virusverzamelbehandeling is hetzelfde als "morsen van besmettelijke stoffen"
Omgaan met uitwerpselen bij transport van kippenembryo's
① Bedek het druppelgebied met absorberend papier, giet het ontsmettingsmiddel met 1% beschikbaar chloor van buiten naar binnen, wikkel de eierschaal en eierdooier en andere vaste stoffen in, verzamel ze met een pincet en plaats ze in de gespecificeerde container voor autoclaaf; en melden bij de dienstdoende persoon Organiseer een tweede ontsmetting.
② Giet met desinfectiemiddel binnen een straal van 1 meter van het valgebied en werk gedurende 30 minuten.
③ Nadat de experimentator overal desinfectiemiddel heeft gespoten, gaat hij naar buiten volgens de voorgeschreven route
④ Meld het dienstdoende personeel om het laboratorium een tweede keer op te ruimen.
De focus van de afhandeling ter plaatse van dit type ongeval:
① Het eigeel is geclassificeerd als een vaste stof en moet onder hoge druk worden opgevangen
② Allantoïsche vloeistof is stroperig en het duurt langer om te desinfecteren dan normale vloeistoffen.
③ De keuze van het desinfectiemiddel hangt af van de ziekteverwekker die wordt gebruikt. Chloordesinfectiemiddel is een algemeen desinfectiemiddel.
4. Preventie van ongevallen in het dierenlaboratorium
01) Naaldprikken, snijwonden, krassen en beten
① Draag beschermende handschoenen: anti-bijthandschoenen/anti-snijhandschoenen
② Gebruik een geschikte houder
③ Bedien nadat het dier volledig is verdoofd.
02) Dieren ontsnappen
① Bedien nadat het dier volledig is verdoofd
② Neem deel aan de technische training van Baoding voor dieren
③ Werking in de biologische veiligheidswerkbank
④ Zorg ervoor dat de kooi is afgedekt en plaats deze terug in de kooihouder; primaten moeten worden uitgerust met geschikte kooisloten.
03) Overdosis anesthesie
① Gebruik verdovingsmiddelen
② Kleine hoeveelheid verdeelde administratie
a) De lichaamstemperatuur van het dier daalt gemakkelijk tijdens de anesthesieperiode en er moeten isolatiemaatregelen worden genomen.
b) De intraveneuze injectie moet langzaam gebeuren. Observeer tegelijkertijd de spierspanning, de hoornvliesreflex en de reactie op huidknijpen. Wanneer deze activiteiten aanzienlijk zijn verzwakt of verdwenen, moet de injectie onmiddellijk worden stopgezet. Bij chronische experimenten, in de koude winter, moet de verdoving vóór injectie worden verwarmd tot de lichaamstemperatuur van het dier.
③ Uitgerust met eerste hulp bij verdoving: cardiotonisch, ademhalingsstimulerend middel, natriumbicarbonaat (gebruikt om acidose te corrigeren), hypertone glucose (gebruikt om de bloeddruk te verhogen), enz.
04) Kippenembryo-experiment
De embryotransfer maakt gebruik van een zeecontainer. Met micro-organismen geïnoculeerde kippenembryo's moeten in het laboratorium worden vervoerd in een dubbellaagse harde, onbreekbare, hogedrukbestendige verpakking om spatten en morsen bij het vallen te voorkomen en om de pathogene micro-organismen in de verpakkingscontainer op te sluiten voor daaropvolgende desinfectie en sterilisatie.